Acido formico di elevata purezza di grado industriale: acidificante efficiente per la produzione chimica

Questo articolo fa parte del tema di ricerca “Uso antimicrobico, resistenza antimicrobica e microbioma degli animali destinati all’alimentazione”. Visualizza tutti i 13 articoli
Gli acidi organici continuano a essere molto richiesti come additivi per mangimi. Ad oggi, l'attenzione si è concentrata sulla sicurezza alimentare, in particolare sulla riduzione dell'incidenza di patogeni di origine alimentare nel pollame e in altri animali. Diversi acidi organici sono attualmente in fase di studio o sono già in uso commerciale. Tra i molti acidi organici ampiamente studiati, l'acido formico è uno di questi. L'acido formico viene aggiunto alle diete del pollame per limitare la presenza di Salmonella e di altri patogeni di origine alimentare nel mangime e nel tratto gastrointestinale dopo l'ingestione. Con la crescente comprensione dell'efficacia e dell'impatto dell'acido formico sull'ospite e sui patogeni di origine alimentare, sta diventando chiaro che la presenza di acido formico può innescare percorsi specifici nella Salmonella. Questa risposta può diventare più complessa quando l'acido formico penetra nel tratto gastrointestinale e interagisce non solo con la Salmonella che lo sta già colonizzando, ma anche con la flora microbica intestinale. La revisione esaminerà i risultati attuali e le prospettive di ulteriori ricerche sul microbioma del pollame e dei mangimi trattati con acido formico.
Sia nella produzione zootecnica che avicola, la sfida è sviluppare strategie di gestione che ottimizzino la crescita e la produttività, limitando al contempo i rischi per la sicurezza alimentare. Storicamente, la somministrazione di antibiotici a concentrazioni subterapeutiche ha migliorato la salute, il benessere e la produttività degli animali (1–3). Dal punto di vista del meccanismo d'azione, è stato proposto che gli antibiotici somministrati a concentrazioni subinibitorie mediano le risposte dell'ospite modulando la flora gastrointestinale (GI) e, a sua volta, le sue interazioni con l'ospite (3). Tuttavia, le continue preoccupazioni circa la potenziale diffusione di patogeni di origine alimentare resistenti agli antibiotici e la loro potenziale associazione con infezioni antibiotico-resistenti nell'uomo hanno portato alla graduale sospensione dell'uso di antibiotici negli animali destinati all'alimentazione (4–8). Pertanto, lo sviluppo di additivi e miglioratori per mangimi che soddisfino almeno alcuni di questi requisiti (miglioramento della salute, del benessere e della produttività degli animali) è di grande interesse sia dal punto di vista della ricerca accademica che dello sviluppo commerciale (5, 9). Diversi additivi commerciali per mangimi sono entrati nel mercato degli alimenti per animali, tra cui probiotici, prebiotici, oli essenziali e composti correlati provenienti da varie fonti vegetali, e sostanze chimiche come le aldeidi (10–14). Altri additivi commerciali per mangimi comunemente utilizzati nel pollame includono batteriofagi, ossido di zinco, enzimi esogeni, prodotti di esclusione competitiva e composti acidi (15, 16).
Tra gli additivi chimici per mangimi esistenti, aldeidi e acidi organici sono stati storicamente i composti più studiati e utilizzati (12, 17–21). Gli acidi organici, in particolare gli acidi grassi a catena corta (SCFA), sono noti antagonisti dei batteri patogeni. Questi acidi organici sono utilizzati come additivi per mangimi non solo per limitare la presenza di agenti patogeni nella matrice alimentare, ma anche per esercitare effetti attivi sulla funzione gastrointestinale (17, 20–24). Inoltre, gli SCFA sono prodotti dalla fermentazione della flora intestinale nel tratto digerente e si ritiene che svolgano un ruolo meccanicistico nella capacità di alcuni probiotici e prebiotici di contrastare gli agenti patogeni ingeriti nel tratto gastrointestinale (21, 23, 25).
Nel corso degli anni, diversi acidi grassi a catena corta (SCFA) hanno attirato molta attenzione come additivi per mangimi. In particolare, propionato, butirrato e formiato sono stati oggetto di numerosi studi e applicazioni commerciali (17, 20, 21, 23, 24, 26). Mentre i primi studi si concentravano sul controllo dei patogeni di origine alimentare nei mangimi per animali e pollame, studi più recenti hanno spostato la loro attenzione sul miglioramento complessivo delle prestazioni animali e della salute gastrointestinale (20, 21, 24). Acetato, propionato e butirrato hanno attirato molta attenzione come additivi per mangimi a base di acidi organici, tra cui anche l'acido formico è un candidato promettente (21, 23). Molta attenzione è stata focalizzata sugli aspetti di sicurezza alimentare dell'acido formico, in particolare sulla riduzione dell'incidenza di patogeni di origine alimentare nei mangimi per animali. Tuttavia, si stanno prendendo in considerazione anche altri possibili utilizzi. L'obiettivo generale di questa revisione è esaminare la storia e lo stato attuale dell'acido formico come miglioratore dei mangimi per animali (Figura 1). In questo studio, esamineremo il meccanismo antibatterico dell'acido formico. Inoltre, analizzeremo più da vicino i suoi effetti su bestiame e pollame e discuteremo possibili metodi per migliorarne l'efficacia.
Fig. 1. Mappa concettuale degli argomenti trattati in questa revisione. In particolare, ci siamo concentrati sui seguenti obiettivi generali: descrivere la storia e lo stato attuale dell'acido formico come miglioratore dell'alimentazione animale, i meccanismi antimicrobici dell'acido formico e l'impatto del suo utilizzo sulla salute di animali e pollame, e potenziali metodi per migliorarne l'efficacia.
La produzione di mangimi per bestiame e pollame è un'operazione complessa che comprende molteplici fasi, tra cui la lavorazione fisica dei cereali (ad esempio, la macinazione per ridurre la dimensione delle particelle), la lavorazione termica per la pellettizzazione e l'aggiunta di molteplici nutrienti alla dieta a seconda delle specifiche esigenze nutrizionali dell'animale (27). Data questa complessità, non sorprende che la lavorazione dei mangimi esponga i cereali a una varietà di fattori ambientali prima che raggiungano il mangimificio, durante la macinazione e successivamente durante il trasporto e l'alimentazione nelle razioni composte (9, 21, 28). Pertanto, nel corso degli anni, è stato identificato nei mangimi un gruppo molto diversificato di microrganismi, tra cui non solo batteri, ma anche batteriofagi, funghi e lieviti (9, 21, 28–31). Alcuni di questi contaminanti, come alcuni funghi, possono produrre micotossine che rappresentano rischi per la salute degli animali (32–35).
Le popolazioni batteriche possono essere relativamente diverse e dipendono in una certa misura dai rispettivi metodi utilizzati per l'isolamento e l'identificazione dei microrganismi, nonché dalla fonte del campione. Ad esempio, il profilo della composizione microbica può differire prima del trattamento termico associato alla pellettizzazione (36). Sebbene i metodi classici di coltura e di piastratura abbiano fornito alcune informazioni, la recente applicazione del metodo di sequenziamento di nuova generazione (NGS) basato sul gene 16S rRNA ha fornito una valutazione più completa della comunità del microbioma foraggero (9). Quando Solanki et al. (37) hanno esaminato il microbioma batterico di chicchi di grano conservati per un periodo di tempo in presenza di fosfina, un fumigante per il controllo degli insetti, hanno scoperto che il microbioma era più diversificato dopo la raccolta e dopo 3 mesi di conservazione. Inoltre, Solanki et al. (37) (37) hanno dimostrato che Proteobacteria, Firmicutes, Actinobacteria, Bacteroidetes e Planctomyces erano i phyla dominanti nei chicchi di grano, Bacillus, Erwinia e Pseudomonas erano i generi dominanti e Enterobacteriaceae costituivano una proporzione minore. Sulla base di confronti tassonomici, hanno concluso che la fumigazione con fosfina alterava significativamente le popolazioni batteriche ma non influenzava la diversità fungina.
Solanki et al. (37) hanno dimostrato che le fonti di mangimi possono contenere anche patogeni di origine alimentare che possono causare problemi di salute pubblica, in base al rilevamento di Enterobacteriaceae nel microbioma. Patogeni di origine alimentare come Clostridium perfringens, Clostridium botulinum, Salmonella, Campylobacter, Escherichia coli O157:H7 e Listeria monocytogenes sono stati associati a mangimi e insilati animali (9, 31, 38). La persistenza di altri patogeni di origine alimentare nei mangimi per animali e pollame è attualmente sconosciuta. Ge et al. (39) hanno analizzato oltre 200 ingredienti per mangimi animali e isolato Salmonella, E. coli ed Enterococchi, ma non hanno rilevato E. coli O157:H7 o Campylobacter. Tuttavia, matrici come il mangime secco possono fungere da fonte di E. coli patogeno. Nel tracciare la fonte di un focolaio del 2016 di Escherichia coli produttore di tossina Shiga (STEC), sierogruppi O121 e O26, associato a malattia umana, Crowe et al. (40) hanno utilizzato il sequenziamento dell'intero genoma per confrontare gli isolati clinici con gli isolati ottenuti da prodotti alimentari. Sulla base di questo confronto, hanno concluso che la fonte probabile era la farina di grano crudo a basso contenuto di umidità proveniente dai mulini. Il basso contenuto di umidità della farina di grano suggerisce che lo STEC possa sopravvivere anche nei mangimi animali a basso contenuto di umidità. Tuttavia, come osservano Crowe et al. (40), l'isolamento dello STEC dai campioni di farina è difficile e richiede metodi di separazione immunomagnetica per recuperare un numero sufficiente di cellule batteriche. Processi diagnostici simili possono anche complicare il rilevamento e l'isolamento di patogeni rari di origine alimentare nei mangimi animali. La difficoltà di rilevamento può anche essere dovuta alla lunga persistenza di questi patogeni in matrici a basso contenuto di umidità. Forghani et al. (41) hanno dimostrato che la farina di grano conservata a temperatura ambiente e inoculata con una miscela di sierogruppi O45, O121 e O145 di Escherichia coli enteroemorragico (EHEC) e Salmonella (S. Typhimurium, S. Agona, S. Enteritidis e S. Anatum) era quantificabile a 84 e 112 giorni ed era ancora rilevabile a 24 e 52 settimane.
Storicamente, Campylobacter non è mai stato isolato da mangimi per animali e pollame con metodi di coltura tradizionali (38, 39), sebbene Campylobacter possa essere facilmente isolato dal tratto gastrointestinale di pollame e prodotti avicoli (42, 43). Tuttavia, i mangimi presentano ancora i loro vantaggi come potenziale fonte. Ad esempio, Alves et al. (44) hanno dimostrato che l'inoculazione di C. jejuni in mangimi per polli ingrassati e la successiva conservazione del mangime a due diverse temperature per 3 o 5 giorni ha portato al recupero di C. jejuni vitali e, in alcuni casi, persino alla loro proliferazione. Hanno concluso che C. jejuni può certamente sopravvivere nei mangimi per pollame e, pertanto, può rappresentare una potenziale fonte di infezione per i polli.
La contaminazione da Salmonella nei mangimi per animali e pollame ha ricevuto molta attenzione in passato e rimane al centro degli sforzi in corso per sviluppare metodi di rilevamento specificamente applicabili ai mangimi e per trovare misure di controllo più efficaci (12, 26, 30, 45–53). Nel corso degli anni, molti studi hanno esaminato l'isolamento e la caratterizzazione di Salmonella in vari stabilimenti di produzione di mangimi e mangimifici (38, 39, 54–61). Nel complesso, questi studi indicano che Salmonella può essere isolata da una varietà di ingredienti, fonti, tipi di mangimi e operazioni di produzione di mangimi. Anche i tassi di prevalenza e i sierotipi di Salmonella predominanti isolati variavano. Ad esempio, Li et al. (57) hanno confermato la presenza di Salmonella spp. È stata rilevata nel 12,5% di 2058 campioni raccolti da mangimi completi, ingredienti per mangimi, alimenti per animali domestici, snack e integratori per animali domestici durante il periodo di raccolta dati dal 2002 al 2009. Inoltre, i sierotipi più comuni rilevati nel 12,5% dei campioni di Salmonella risultati positivi erano S. Senftenberg e S. Montevideo (57). In uno studio su alimenti pronti al consumo e sottoprodotti di mangimi animali in Texas, Hsieh et al. (58) hanno riportato che la più alta prevalenza di Salmonella si riscontrava nella farina di pesce, seguita dalle proteine ​​animali, con S. Mbanka e S. Montevideo come sierotipi più comuni. Anche i mangimifici presentano diversi potenziali punti di contaminazione dei mangimi durante la miscelazione e l'aggiunta di ingredienti (9, 56, 61). Magossi et al. (61) sono stati in grado di dimostrare che possono verificarsi molteplici punti di contaminazione durante la produzione di mangimi negli Stati Uniti. Infatti, Magossi et al. (61) hanno riscontrato almeno una coltura positiva di Salmonella in 11 mangimifici (12 punti di campionamento in totale) in otto stati degli Stati Uniti. Considerata la potenziale contaminazione da Salmonella durante la manipolazione, il trasporto e l'alimentazione quotidiana dei mangimi, non sorprende che vengano compiuti notevoli sforzi per sviluppare additivi per mangimi in grado di ridurre e mantenere bassi i livelli di contaminazione microbica durante l'intero ciclo di produzione animale.
Si sa poco sul meccanismo della risposta specifica di Salmonella all'acido formico. Tuttavia, Huang et al. (62) hanno indicato che l'acido formico è presente nell'intestino tenue dei mammiferi e che le specie di Salmonella sono in grado di produrlo. Huang et al. (62) hanno utilizzato una serie di mutanti di delezione di pathway chiave per rilevare l'espressione dei geni di virulenza di Salmonella e hanno scoperto che il formiato può agire come un segnale diffusibile per indurre Salmonella a invadere le cellule epiteliali Hep-2. Recentemente, Liu et al. (63) hanno isolato un trasportatore del formiato, FocA, da Salmonella typhimurium che funziona come un canale specifico per il formiato a pH 7,0, ma può anche funzionare come canale di esportazione passivo a pH esterno elevato o come canale di importazione secondario attivo per formiato/ione idrogeno a pH basso. Tuttavia, questo studio è stato condotto su un solo sierotipo di S. Typhimurium. Rimane la questione se tutti i sierotipi rispondano all'acido formico con meccanismi simili. Questa rimane una domanda di ricerca critica che dovrebbe essere affrontata in studi futuri. Indipendentemente dai risultati, rimane prudente utilizzare più sierotipi di Salmonella o persino più ceppi di ciascun sierotipo negli esperimenti di screening quando si sviluppano raccomandazioni generali per l'uso di integratori acidi per ridurre i livelli di Salmonella negli alimenti. Approcci più recenti, come l'uso del barcoding genetico per codificare i ceppi e distinguere diversi sottogruppi dello stesso sierotipo (9, 64), offrono l'opportunità di discernere differenze più sottili che possono influenzare le conclusioni e l'interpretazione delle differenze.
Anche la natura chimica e la forma di dissociazione del formiato possono essere importanti. In una serie di studi, Beyer et al. (65–67) hanno dimostrato che l'inibizione di Enterococcus faecium, Campylobacter jejuni e Campylobacter coli era correlata alla quantità di acido formico dissociato ed era indipendente dal pH o dall'acido formico non dissociato. Anche la forma chimica del formiato a cui i batteri sono esposti sembra essere importante. Kovanda et al. (68) hanno esaminato diversi organismi Gram-negativi e Gram-positivi e hanno confrontato le concentrazioni minime inibenti (MIC) del formiato di sodio (500–25.000 mg/L) e di una miscela di formiato di sodio e formiato libero (40/60 m/v; 10–10.000 mg/L). Sulla base dei valori di MIC, hanno scoperto che il formiato di sodio era inibitorio solo contro Campylobacter jejuni, Clostridium perfringens, Streptococcus suis e Streptococcus pneumoniae, ma non contro Escherichia coli, Salmonella typhimurium o Enterococcus faecalis. Al contrario, una miscela di formiato di sodio e formiato di sodio libero era inibitoria contro tutti gli organismi, portando gli autori a concludere che l'acido formico libero possiede la maggior parte delle proprietà antimicrobiche. Sarebbe interessante esaminare diversi rapporti di queste due forme chimiche per determinare se l'intervallo dei valori di MIC sia correlato al livello di acido formico presente nella formula mista e alla risposta all'acido formico al 100%.
Gomez-Garcia et al. (69) hanno testato combinazioni di oli essenziali e acidi organici (come l'acido formico) contro molteplici isolati di Escherichia coli, Salmonella e Clostridium perfringens ottenuti da suini. Hanno testato l'efficacia di sei acidi organici, tra cui l'acido formico, e sei oli essenziali contro gli isolati suini, utilizzando la formaldeide come controllo positivo. Gomez-García et al. (69) hanno determinato la MIC50, la MBC50 e la MIC50/MBC50 dell'acido formico contro Escherichia coli (600 e 2400 ppm, 4), Salmonella (600 e 2400 ppm, 4) e Clostridium perfringens (1200 e 2400 ppm, 2), tra i quali l'acido formico si è rivelato più efficace di tutti gli acidi organici contro E. coli e Salmonella. (69) L'acido formico è efficace contro Escherichia coli e Salmonella grazie alle sue piccole dimensioni molecolari e alla lunga catena (70).
Beyer et al. hanno esaminato ceppi di Campylobacter isolati da suini (66) e ceppi di Campylobacter jejuni isolati da pollame (67) e hanno dimostrato che l'acido formico si dissocia a concentrazioni coerenti con le risposte MIC misurate per altri acidi organici. Tuttavia, le potenze relative di questi acidi, incluso l'acido formico, sono state messe in discussione poiché Campylobacter può utilizzare questi acidi come substrati (66, 67). L'utilizzo di acidi da parte di C. jejuni non è sorprendente poiché è stato dimostrato che ha un metabolismo non glicolitico. Pertanto, C. jejuni ha una capacità limitata di catabolismo dei carboidrati e si affida alla gluconeogenesi da amminoacidi e acidi organici per la maggior parte del suo metabolismo energetico e della sua attività biosintetica (71, 72). Uno studio iniziale di Line et al. (73) hanno utilizzato un array fenotipico contenente 190 fonti di carbonio e hanno dimostrato che C. jejuni 11168(GS) può utilizzare acidi organici come fonti di carbonio, la maggior parte dei quali sono intermedi del ciclo degli acidi tricarbossilici. Ulteriori studi di Wagli et al. (74) utilizzando un array fenotipico di utilizzo del carbonio hanno dimostrato che i ceppi di C. jejuni ed E. coli esaminati nel loro studio sono in grado di crescere su acidi organici come fonte di carbonio. Il formiato è il principale donatore di elettroni per il metabolismo energetico respiratorio di C. jejuni e, pertanto, la principale fonte di energia per C. jejuni (71, 75). C. jejuni è in grado di utilizzare il formiato come donatore di idrogeno tramite un complesso di formiato deidrogenasi legato alla membrana che ossida il formiato ad anidride carbonica, protoni ed elettroni e funge da donatore di elettroni per la respirazione (72).
L'acido formico ha una lunga storia di utilizzo come miglioratore antimicrobico dei mangimi, ma alcuni insetti possono anche produrlo per utilizzarlo come sostanza chimica di difesa antimicrobica. Rossini et al. (76) hanno suggerito che l'acido formico potrebbe essere un costituente della linfa acida delle formiche descritta da Ray (77) quasi 350 anni fa. Da allora, la nostra comprensione della produzione di acido formico nelle formiche e in altri insetti è aumentata considerevolmente, ed è ora noto che questo processo fa parte di un complesso sistema di difesa dalle tossine negli insetti (78). Vari gruppi di insetti, tra cui api senza pungiglione, formiche appuntite (Hymenoptera: Apidae), coleotteri carabidi (Galerita lecontei e G. janus), formiche senza pungiglione (Formicinae) e alcune larve di falena (Lepidoptera: Myrmecophaga), sono noti per produrre acido formico come sostanza chimica difensiva (76, 78–82).
Le formiche sono forse le meglio caratterizzate perché possiedono acidociti, aperture specializzate che consentono loro di spruzzare un veleno composto principalmente da acido formico (82). Le formiche usano la serina come precursore e immagazzinano grandi quantità di formiato nelle loro ghiandole velenifere, che sono sufficientemente isolate da proteggere le formiche ospiti dalla citotossicità del formiato fino a quando non viene spruzzato (78, 83). L'acido formico che secernono può (1) fungere da feromone di allarme per attirare altre formiche; (2) essere una sostanza chimica difensiva contro competitori e predatori; e (3) agire come agente antimicotico e antibatterico quando combinato con la resina come parte del materiale del nido (78, 82, 84–88). L'acido formico prodotto dalle formiche ha proprietà antimicrobiche, suggerendo che potrebbe essere utilizzato come additivo topico. Ciò è stato dimostrato da Bruch et al. (88), che hanno aggiunto acido formico sintetico alla resina e ne hanno migliorato significativamente l'attività antimicotica. Un'ulteriore prova dell'efficacia dell'acido formico e della sua utilità biologica è che i formichieri giganti, che non sono in grado di produrre acido gastrico, consumano formiche contenenti acido formico per procurarsi acido formico concentrato come acido digestivo alternativo (89).
L'uso pratico dell'acido formico in agricoltura è stato considerato e studiato per molti anni. In particolare, l'acido formico può essere utilizzato come additivo per mangimi e insilati. Il formiato di sodio, sia in forma solida che liquida, è considerato sicuro per tutte le specie animali, i consumatori e l'ambiente (90). Sulla base della loro valutazione (90), una concentrazione massima di 10.000 mg di equivalenti di acido formico/kg di mangime è stata considerata sicura per tutte le specie animali, mentre una concentrazione massima di 12.000 mg di equivalenti di acido formico/kg di mangime è stata considerata sicura per i suini. L'uso dell'acido formico come miglioratore dei mangimi è stato studiato per molti anni. Si ritiene che abbia valore commerciale come conservante per insilati e agente antimicrobico nei mangimi per animali e pollame.
Gli additivi chimici come gli acidi sono sempre stati un elemento integrante nella produzione di insilato e nella gestione dell'alimentazione (91, 92). Borreani et al. (91) hanno osservato che per ottenere una produzione ottimale di insilato di alta qualità è necessario preservare la qualità del foraggio trattenendo al contempo la massima quantità possibile di sostanza secca. Il risultato di tale ottimizzazione è la minimizzazione delle perdite in tutte le fasi del processo di insilamento: dalle condizioni aerobiche iniziali nel silo alla successiva fermentazione, stoccaggio e riapertura del silo per l'alimentazione. Metodi specifici per ottimizzare la produzione di insilato in campo e la successiva fermentazione dell'insilato sono stati discussi in dettaglio altrove (91, 93-95) e non saranno trattati in dettaglio in questa sede. Il problema principale è il deterioramento ossidativo causato da lieviti e muffe in presenza di ossigeno nell'insilato (91, 92). Pertanto, sono stati introdotti inoculanti biologici e additivi chimici per contrastare gli effetti negativi del deterioramento (91, 92). Altre considerazioni per gli additivi per insilato includono la limitazione della diffusione di agenti patogeni che possono essere presenti nell'insilato (ad esempio, Escherichia coli patogena, Listeria e Salmonella) nonché funghi produttori di micotossine (96–98).
Mack et al. (92) hanno suddiviso gli additivi acidi in due categorie. Acidi come l'acido propionico, acetico, sorbico e benzoico mantengono la stabilità aerobica dell'insilato quando somministrato ai ruminanti, limitando la crescita di lieviti e muffe (92). Mack et al. (92) hanno separato l'acido formico dagli altri acidi e lo hanno considerato un acidificante diretto che inibisce la clostridia e i microrganismi alteranti, mantenendo al contempo l'integrità delle proteine ​​dell'insilato. In pratica, le loro forme saline sono le forme chimiche più comuni per evitare le proprietà corrosive degli acidi nella forma non salina (91). Molti gruppi di ricerca hanno anche studiato l'acido formico come additivo acido per l'insilato. L'acido formico è noto per il suo rapido potenziale acidificante e il suo effetto inibitorio sulla crescita di microrganismi dannosi per l'insilato che riducono il contenuto di proteine ​​e carboidrati idrosolubili dell'insilato (99). Pertanto, He et al. (92) hanno confrontato l'acido formico con gli additivi acidi nell'insilato. (100) hanno dimostrato che l'acido formico può inibire l'Escherichia coli e abbassare il pH dell'insilato. Colture batteriche che producono acido formico e lattico sono state aggiunte all'insilato per stimolare l'acidificazione e la produzione di acidi organici (101). Infatti, Cooley et al. (101) hanno scoperto che quando l'insilato veniva acidificato con acido formico al 3% (p/v), la produzione di acido lattico e formico superava rispettivamente 800 e 1000 mg di acido organico/100 g di campione. Mack et al. (92) hanno esaminato in dettaglio la letteratura sulla ricerca sugli additivi per insilato, inclusi gli studi pubblicati dal 2000 che si concentravano e/o includevano acido formico e altri acidi. Pertanto, questa revisione non discuterà in dettaglio i singoli studi, ma si limiterà a riassumere alcuni punti chiave riguardanti l'efficacia dell'acido formico come additivo chimico per insilato. Sono stati studiati sia l'acido formico non tamponato che quello tamponato e nella maggior parte dei casi Clostridium spp. Le sue attività relative (assorbimento di carboidrati, proteine ​​e lattato ed escrezione di butirrato) tendono a diminuire, mentre la produzione di ammoniaca e butirrato diminuisce e la ritenzione di sostanza secca aumenta (92). Esistono limitazioni alle prestazioni dell'acido formico, ma il suo utilizzo come additivo per insilato in combinazione con altri acidi sembra superare alcuni di questi problemi (92).
L'acido formico può inibire i batteri patogeni che rappresentano un rischio per la salute umana. Ad esempio, Pauly e Tam (102) hanno inoculato piccoli silos di laboratorio con L. monocytogenes contenenti tre diversi livelli di sostanza secca (200, 430 e 540 g/kg) di loietto e poi integrato con acido formico (3 ml/kg) o batteri lattici (8 × 105/g) ed enzimi cellulolitici. Hanno riferito che entrambi i trattamenti hanno ridotto L. monocytogenes a livelli non rilevabili nell'insilato a bassa sostanza secca (200 g/kg). Tuttavia, nell'insilato a media sostanza secca (430 g/kg), L. monocytogenes era ancora rilevabile dopo 30 giorni nell'insilato trattato con acido formico. La riduzione di L. monocytogenes sembrava essere associata a pH più basso, acido lattico e acidi indissociati combinati. Ad esempio, Pauly e Tam (102) hanno osservato che i livelli di acido lattico e di acido non dissociato combinato erano particolarmente importanti, il che potrebbe spiegare perché non è stata osservata alcuna riduzione di L. monocytogenes nei terreni trattati con acido formico provenienti da insilati con un contenuto di sostanza secca più elevato. Studi simili dovrebbero essere condotti in futuro per altri patogeni comuni dell'insilato, come Salmonella ed E. coli patogeni. Un'analisi più completa della sequenza del 16S rDNA dell'intera comunità microbica dell'insilato potrebbe anche aiutare a identificare i cambiamenti nella popolazione microbica complessiva dell'insilato che si verificano nelle diverse fasi della fermentazione dell'insilato in presenza di acido formico (103). L'ottenimento di dati sul microbioma può fornire un supporto analitico per prevedere meglio l'andamento della fermentazione dell'insilato e per sviluppare combinazioni di additivi ottimali per mantenere un'elevata qualità dell'insilato.
Nei mangimi per animali a base di cereali, l'acido formico viene utilizzato come agente antimicrobico per limitare i livelli di patogeni in varie matrici di mangimi derivati ​​da cereali, nonché in alcuni ingredienti dei mangimi come i sottoprodotti di origine animale. Gli effetti sulle popolazioni di patogeni nel pollame e in altri animali possono essere ampiamente suddivisi in due categorie: effetti diretti sulla popolazione di patogeni del mangime stesso ed effetti indiretti sui patogeni che colonizzano il tratto gastrointestinale degli animali dopo il consumo del mangime trattato (20, 21, 104). Chiaramente, queste due categorie sono interconnesse, poiché una riduzione dei patogeni nel mangime dovrebbe comportare una riduzione della colonizzazione quando l'animale consuma il mangime. Tuttavia, le proprietà antimicrobiche di un particolare acido aggiunto a una matrice di mangime possono essere influenzate da diversi fattori, come la composizione del mangime e la forma in cui l'acido viene aggiunto (21, 105).
Storicamente, l'uso dell'acido formico e di altri acidi correlati si è concentrato principalmente sul controllo diretto della Salmonella nei mangimi per animali e pollame (21). I risultati di questi studi sono stati riassunti in dettaglio in diverse revisioni pubblicate in tempi diversi (18, 21, 26, 47, 104–106), pertanto in questa revisione vengono discussi solo alcuni dei risultati chiave di questi studi. Diversi studi hanno dimostrato che l'attività antimicrobica dell'acido formico nelle matrici alimentari dipende dalla dose e dal tempo di esposizione all'acido formico, dal contenuto di umidità della matrice alimentare e dalla concentrazione batterica nel mangime e nel tratto gastrointestinale dell'animale (19, 21, 107–109). Anche il tipo di matrice alimentare e la fonte degli ingredienti dei mangimi sono fattori influenzanti. Pertanto, numerosi studi hanno dimostrato che i livelli di Salmonella nelle tossine batteriche isolate dai sottoprodotti animali possono differire da quelli isolati dai sottoprodotti vegetali (39, 45, 58, 59, 110–112). Tuttavia, le differenze nella risposta ad acidi come l'acido formico possono essere correlate a differenze nella sopravvivenza dei sierotipi nella dieta e alla temperatura di lavorazione della dieta (19, 113, 114). Le differenze nella risposta dei sierotipi al trattamento acido possono anche essere un fattore di contaminazione del pollame con mangimi contaminati (113, 115) e anche le differenze nell'espressione genica della virulenza (116) possono svolgere un ruolo. Le differenze nella tolleranza agli acidi possono a loro volta influenzare il rilevamento di Salmonella nei terreni di coltura se gli acidi presenti nei mangimi non sono adeguatamente tamponati (21, 105, 117–122). La forma fisica della dieta (in termini di dimensione delle particelle) può anche influenzare la disponibilità relativa di acido formico nel tratto gastrointestinale (123).
Anche le strategie per ottimizzare l'attività antimicrobica dell'acido formico aggiunto ai mangimi sono fondamentali. Concentrazioni più elevate di acido sono state suggerite per ingredienti di mangimi ad alta contaminazione prima della miscelazione, per ridurre al minimo i potenziali danni alle attrezzature del mangimificio e i problemi di appetibilità dei mangimi (105). Jones (51) ha concluso che la Salmonella presente nei mangimi prima della pulizia chimica è più difficile da controllare rispetto alla Salmonella a contatto con i mangimi dopo il trattamento chimico. Il trattamento termico dei mangimi durante la lavorazione nel mangimificio è stato suggerito come intervento per limitare la contaminazione da Salmonella dei mangimi, ma questo dipende dalla composizione dei mangimi, dalla granulometria e da altri fattori associati al processo di macinazione (51). L'attività antimicrobica degli acidi dipende anche dalla temperatura e temperature elevate in presenza di acidi organici possono avere un effetto inibitorio sinergico sulla Salmonella, come osservato nelle colture liquide di Salmonella (124, 125). Diversi studi su mangimi contaminati da Salmonella supportano l'idea che le temperature elevate aumentino l'efficacia degli acidi nella matrice alimentare (106, 113, 126). Amado et al. (127) hanno utilizzato un disegno composito centrale per studiare l'interazione tra temperatura e acido (acido formico o lattico) in 10 ceppi di Salmonella enterica ed Escherichia coli isolati da vari mangimi per bovini e inoculati in pellet acidificati per bovini. Hanno concluso che il calore era il fattore dominante che influenzava la riduzione microbica, insieme all'acido e al tipo di isolato batterico. L'effetto sinergico con l'acido predomina ancora, quindi è possibile utilizzare temperature e concentrazioni di acido più basse. Tuttavia, hanno anche notato che gli effetti sinergici non sono stati sempre osservati quando è stato utilizzato acido formico, il che li ha portati a sospettare che la volatilizzazione dell'acido formico a temperature più elevate o gli effetti tampone dei componenti della matrice alimentare fossero un fattore.
Limitare la durata di conservazione del mangime prima della somministrazione agli animali è un modo per controllare l'introduzione di patogeni di origine alimentare nell'organismo dell'animale durante l'alimentazione. Tuttavia, una volta che l'acido presente nel mangime è penetrato nel tratto gastrointestinale, può continuare a esercitare la sua attività antimicrobica. L'attività antimicrobica delle sostanze acide somministrate esogenamente nel tratto gastrointestinale può dipendere da una varietà di fattori, tra cui la concentrazione di acido gastrico, il sito attivo del tratto gastrointestinale, il pH e il contenuto di ossigeno del tratto gastrointestinale, l'età dell'animale e la composizione relativa della popolazione microbica gastrointestinale (che dipende dalla posizione del tratto gastrointestinale e dalla maturità dell'animale) (21, 24, 128–132). Inoltre, la popolazione residente di microrganismi anaerobici nel tratto gastrointestinale (che diventa dominante nel tratto digerente inferiore degli animali monogastrici man mano che maturano) produce attivamente acidi organici attraverso la fermentazione, che a sua volta può anche avere un effetto antagonista sui patogeni transitori che entrano nel tratto gastrointestinale (17, 19–21).
Gran parte delle prime ricerche si è concentrata sull'uso di acidi organici, incluso il formiato, per limitare la Salmonella nel tratto gastrointestinale del pollame, argomento discusso in dettaglio in diverse revisioni (12, 20, 21). Considerando questi studi nel loro complesso, è possibile trarre diverse osservazioni chiave. McHan e Shotts (133) hanno riportato che l'alimentazione con acido formico e propionico ha ridotto i livelli di Salmonella Typhimurium nel cieco di polli inoculati con i batteri e li hanno quantificati a 7, 14 e 21 giorni di età. Tuttavia, quando Hume et al. (128) hanno monitorato il propionato marcato con C-14, hanno concluso che una quantità molto ridotta di propionato nella dieta può raggiungere il cieco. Resta da stabilire se questo valga anche per l'acido formico. Tuttavia, recentemente Bourassa et al. (134) hanno riferito che la somministrazione di acido formico e propionico ha ridotto i livelli di Salmonella Typhimurium nel cieco dei polli inoculati con i batteri, che sono stati quantificati a 7, 14 e 21 giorni di età. (132) hanno osservato che la somministrazione di acido formico a 4 g/t ai polli da carne durante il periodo di crescita di 6 settimane ha ridotto la concentrazione di S. Typhimurium nel cieco al di sotto del livello di rilevamento.
La presenza di acido formico nella dieta può avere effetti su altre parti del tratto gastrointestinale del pollame. Al-Tarazi e Alshavabkeh (134) hanno dimostrato che una miscela di acido formico e acido propionico potrebbe ridurre la contaminazione da Salmonella pullorum (S. PRlorum) nel gozzo e nel cieco. Thompson e Hinton (129) hanno osservato che una miscela disponibile in commercio di acido formico e acido propionico aumentava la concentrazione di entrambi gli acidi nel gozzo e nel ventriglio ed era battericida contro Salmonella Enteritidis PT4 in un modello in vitro in condizioni di allevamento rappresentative. Questa nozione è supportata dai dati in vivo di Bird et al. (135) che hanno aggiunto acido formico all'acqua potabile di polli da carne durante un periodo di digiuno simulato prima della spedizione, simile al digiuno a cui i polli da carne sono sottoposti prima del trasporto in un impianto di lavorazione avicola. L'aggiunta di acido formico all'acqua potabile ha determinato una riduzione del numero di S. Typhimurium nelle colture e nell'epididimo, nonché una riduzione della frequenza di colture positive a S. Typhimurium, ma non del numero di epididimi positivi (135). Lo sviluppo di sistemi di somministrazione in grado di proteggere gli acidi organici mentre sono attivi nel tratto gastrointestinale inferiore può contribuire a migliorarne l'efficacia. Ad esempio, è stato dimostrato che la microincapsulazione dell'acido formico e la sua aggiunta al mangime riducono il numero di Salmonella Enteritidis nel contenuto cecale (136). Tuttavia, questo può variare a seconda della specie animale. Ad esempio, Walia et al. (137) non hanno osservato una riduzione della Salmonella nel cieco o nei linfonodi di suini di 28 giorni alimentati con una miscela di acido formico, acido citrico e capsule di olio essenziale e, sebbene l'escrezione di Salmonella nelle feci fosse ridotta al giorno 14, non si è ridotta al giorno 28. Hanno dimostrato che la trasmissione orizzontale della Salmonella tra suini è stata prevenuta.
Sebbene gli studi sull'acido formico come agente antimicrobico in allevamento si siano concentrati principalmente sulla Salmonella di origine alimentare, esistono anche alcuni studi mirati ad altri patogeni gastrointestinali. Studi in vitro di Kovanda et al. (68) suggeriscono che l'acido formico possa essere efficace anche contro altri patogeni gastrointestinali di origine alimentare, tra cui Escherichia coli e Campylobacter jejuni. Studi precedenti hanno dimostrato che acidi organici (ad esempio, acido lattico) e miscele commerciali contenenti acido formico come ingrediente possono ridurre i livelli di Campylobacter nel pollame (135, 138). Tuttavia, come precedentemente osservato da Beyer et al. (67), l'uso dell'acido formico come agente antimicrobico contro Campylobacter può richiedere cautela. Questo risultato è particolarmente problematico per l'integrazione alimentare nel pollame poiché l'acido formico è la principale fonte di energia respiratoria per C. jejuni. Inoltre, si ritiene che parte della sua nicchia gastrointestinale sia dovuta all'alimentazione incrociata metabolica con prodotti di fermentazione acida mista prodotti da batteri gastrointestinali, come il formiato (139). Questa opinione ha un certo fondamento. Poiché il formiato è un agente chemioattrattivo per C. jejuni, i doppi mutanti con difetti sia nella formiato deidrogenasi che nell'idrogenasi presentano tassi ridotti di colonizzazione del cieco nei polli da carne rispetto ai ceppi selvatici di C. jejuni (140, 141). Non è ancora chiaro in che misura l'integrazione esterna di acido formico influenzi la colonizzazione del tratto gastrointestinale da parte di C. jejuni nei polli. Le concentrazioni effettive di formiato gastrointestinale potrebbero essere inferiori a causa del catabolismo del formiato da parte di altri batteri gastrointestinali o dell'assorbimento del formiato nel tratto gastrointestinale superiore, quindi diverse variabili potrebbero influenzare questo dato. Inoltre, il formiato è un potenziale prodotto di fermentazione prodotto da alcuni batteri gastrointestinali, il che potrebbe influenzare i livelli totali di formiato gastrointestinale. La quantificazione del formiato nel contenuto gastrointestinale e l'identificazione dei geni della formiato deidrogenasi mediante metagenomica potrebbero far luce su alcuni aspetti dell'ecologia dei microrganismi produttori di formiato.
Roth et al. (142) hanno confrontato gli effetti della somministrazione ai polli da carne dell'antibiotico enrofloxacina o di una miscela di acido formico, acetico e propionico sulla prevalenza di Escherichia coli resistente agli antibiotici. Gli isolati di E. coli totali e resistenti agli antibiotici sono stati contati in campioni fecali aggregati di polli da carne di 1 giorno di età e in campioni di contenuto cieco di polli da carne di 14 e 38 giorni di età. Gli isolati di E. coli sono stati testati per la resistenza ad ampicillina, cefotaxime, ciprofloxacina, streptomicina, sulfametossazolo e tetraciclina secondo i breakpoint precedentemente determinati per ciascun antibiotico. Quando le rispettive popolazioni di E. coli sono state quantificate e caratterizzate, né l'enrofloxacina né l'integrazione con cocktail di acidi hanno alterato il numero totale di E. coli isolati dal cieco di polli da carne di 17 e 28 giorni di età. Gli uccelli alimentati con la dieta integrata con enrofloxacina presentavano livelli aumentati di E. coli resistente a ciprofloxacina, streptomicina, sulfametossazolo e tetraciclina e livelli ridotti di E. coli resistente a cefotaxime nel cieco. Gli uccelli alimentati con la miscela presentavano un numero ridotto di E. coli resistente ad ampicillina e tetraciclina nel cieco rispetto ai controlli e agli uccelli integrati con enrofloxacina. Gli uccelli alimentati con la miscela acida presentavano anche una riduzione del numero di E. coli resistente a ciprofloxacina e sulfametossazolo nel cieco rispetto agli uccelli alimentati con enrofloxacina. Il meccanismo con cui gli acidi riducono il numero di E. coli resistenti agli antibiotici senza ridurre il numero totale di E. coli non è ancora chiaro. Tuttavia, i risultati dello studio di Roth et al. sono coerenti con quelli del gruppo trattato con enrofloxacina. (142) Ciò potrebbe essere un'indicazione di una ridotta diffusione dei geni di resistenza agli antibiotici in E. coli, come gli inibitori legati ai plasmidi descritti da Cabezon et al. (143). Sarebbe interessante condurre un'analisi più approfondita della resistenza agli antibiotici mediata dai plasmidi nella popolazione gastrointestinale del pollame in presenza di additivi per mangimi come l'acido formico e perfezionare ulteriormente questa analisi valutando il resistoma gastrointestinale.
Lo sviluppo di additivi alimentari antimicrobici ottimali contro i patogeni dovrebbe idealmente avere un impatto minimo sulla flora gastrointestinale complessiva, in particolare su quel microbiota considerato benefico per l'ospite. Tuttavia, gli acidi organici somministrati esogeni possono avere effetti dannosi sul microbiota gastrointestinale residente e, in una certa misura, annullarne le proprietà protettive contro i patogeni. Ad esempio, Thompson e Hinton (129) hanno osservato una riduzione dei livelli di acido lattico nelle galline ovaiole alimentate con una miscela di acido formico e propionico, suggerendo che la presenza di questi acidi organici esogeni nelle colture ha comportato una riduzione dei lattobacilli. I lattobacilli sono considerati una barriera alla Salmonella e, pertanto, l'alterazione di questo microbiota residente nelle colture può essere dannosa per la riduzione efficace della colonizzazione del tratto gastrointestinale da parte di Salmonella (144). Açıkgöz et al. hanno scoperto che gli effetti sul tratto gastrointestinale inferiore degli uccelli potrebbero essere inferiori. (145) Non sono state riscontrate differenze nella flora intestinale totale o nella conta di Escherichia coli nei polli da carne di 42 giorni che bevevano acqua acidificata con acido formico. Gli autori hanno suggerito che ciò potrebbe essere dovuto al fatto che il formiato viene metabolizzato nel tratto gastrointestinale superiore, come è stato osservato da altri ricercatori con acidi grassi a catena corta (SCFA) somministrati esogenamente (128, 129).
Proteggere l'acido formico attraverso una qualche forma di incapsulamento può aiutarlo a raggiungere il tratto gastrointestinale inferiore. (146) hanno osservato che l'acido formico microincapsulato ha aumentato significativamente il contenuto totale di acidi grassi a catena corta (SCFA) nel cieco dei suini rispetto ai suini alimentati con acido formico non protetto. Questo risultato ha portato gli autori a suggerire che l'acido formico può raggiungere efficacemente il tratto gastrointestinale inferiore se adeguatamente protetto. Tuttavia, diversi altri parametri, come le concentrazioni di formiato e lattato, sebbene superiori a quelle dei suini alimentati con una dieta di controllo, non erano statisticamente diversi da quelli dei suini alimentati con una dieta a base di formiato non protetta. Sebbene i suini alimentati sia con acido formico non protetto che protetto abbiano mostrato un aumento di quasi tre volte dell'acido lattico, la conta dei lattobacilli non è stata alterata da nessuno dei due trattamenti. Le differenze possono essere più pronunciate per altri microrganismi produttori di acido lattico nel cieco (1) che non vengono rilevati da questi metodi e/o (2) la cui attività metabolica è influenzata, alterando così il modello di fermentazione in modo tale che i lattobacilli residenti producano più acido lattico.
Per studiare più accuratamente gli effetti degli additivi alimentari sul tratto gastrointestinale degli animali da allevamento, sono necessari metodi di identificazione microbica ad alta risoluzione. Negli ultimi anni, il sequenziamento di nuova generazione (NGS) del gene dell'RNA 16S è stato utilizzato per identificare i taxa del microbioma e confrontare la diversità delle comunità microbiche (147), il che ha fornito una migliore comprensione delle interazioni tra additivi alimentari e microbiota gastrointestinale di animali destinati all'alimentazione come il pollame.
Diversi studi hanno utilizzato il sequenziamento del microbioma per valutare la risposta del microbioma gastrointestinale del pollo all'integrazione di formiato. Oakley et al. (148) hanno condotto uno studio su polli da carne di 42 giorni di età, integrati con varie combinazioni di acido formico, acido propionico e acidi grassi a catena media nell'acqua di bevanda o nel mangime. I polli immunizzati sono stati sottoposti a challenge con un ceppo di Salmonella typhimurium resistente all'acido nalidixico e i loro ciechi sono stati rimossi a 0, 7, 21 e 42 giorni di età. Campioni di ceco sono stati preparati per il pirosequenziamento 454 e i risultati del sequenziamento sono stati valutati per la classificazione e il confronto di similarità. Nel complesso, i trattamenti non hanno influenzato significativamente il microbioma del ceco o i livelli di S. Typhimurium. Tuttavia, i tassi complessivi di rilevamento di Salmonella sono diminuiti con l'invecchiamento degli uccelli, come confermato dall'analisi tassonomica del microbioma, e anche l'abbondanza relativa delle sequenze di Salmonella è diminuita nel tempo. Gli autori osservano che con l'invecchiamento dei polli da carne, la diversità della popolazione microbica cecale aumentava, con i cambiamenti più significativi nella flora gastrointestinale osservati in tutti i gruppi di trattamento. In uno studio recente, Hu et al. (149) hanno confrontato gli effetti dell'acqua potabile e dell'alimentazione con una dieta integrata con una miscela di acidi organici (acido formico, acido acetico, acido propionico e formiato di ammonio) e virginiamicina su campioni di microbioma cecale di polli da carne raccolti in due fasi (1–21 giorni e 22–42 giorni). Sebbene siano state osservate alcune differenze nella diversità del microbioma cecale tra i gruppi di trattamento a 21 giorni di età, non sono state rilevate differenze nella diversità dei batteri α o β a 42 giorni. Data l'assenza di differenze a 42 giorni di età, gli autori hanno ipotizzato che il vantaggio di crescita possa essere dovuto a un più precoce insediamento di un microbioma con diversità ottimale.
L'analisi del microbioma focalizzata solo sulla comunità microbica cecale potrebbe non riflettere la sede nel tratto gastrointestinale in cui si verificano la maggior parte degli effetti degli acidi organici alimentari. Il microbioma del tratto gastrointestinale superiore dei polli da carne potrebbe essere più suscettibile agli effetti degli acidi organici alimentari, come suggerito dai risultati di Hume et al. (128). Hume et al. (128) hanno dimostrato che la maggior parte del propionato aggiunto esogeno veniva assorbito nel tratto gastrointestinale superiore degli uccelli. Anche recenti studi sulla caratterizzazione dei microrganismi gastrointestinali supportano questa ipotesi. Nava et al. (150) hanno dimostrato che una combinazione di una miscela di acidi organici [acido DL-2-idrossi-4(metiltio)butirrico], acido formico e acido propionico (HFP) influenzava il microbiota intestinale e aumentava la colonizzazione di Lactobacillus nell'ileo dei polli. Recentemente, Goodarzi Borojeni et al. (150) hanno dimostrato che una combinazione di una miscela di acidi organici [acido DL-2-idrossi-4(metiltio)butirrico], acido formico e acido propionico (HFP) influenzava il microbiota intestinale e aumentava la colonizzazione di Lactobacillus nell'ileo dei polli. (151) hanno studiato l'alimentazione di polli da carne con una miscela di acido formico e acido propionico a due concentrazioni (0,75% e 1,50%) per 35 giorni. Al termine dell'esperimento, il gozzo, lo stomaco, i due terzi distali dell'ileo e il cieco sono stati rimossi e sono stati prelevati campioni per l'analisi quantitativa di flora gastrointestinale specifica e metaboliti mediante RT-PCR. In coltura, la concentrazione di acidi organici non ha influenzato l'abbondanza di Lactobacillus o Bifidobacterium, ma ha aumentato la popolazione di Clostridium. Nell'ileo, gli unici cambiamenti sono stati una diminuzione di Lactobacillus ed Enterobacter, mentre nel cieco questa flora è rimasta invariata (151). Alla massima concentrazione di integrazione di acidi organici, la concentrazione totale di acido lattico (D e L) è risultata ridotta nel gozzo, la concentrazione di entrambi gli acidi organici è risultata ridotta nel ventriglio e la concentrazione di acidi organici è risultata inferiore nel cieco. Non si sono osservate variazioni nell'ileo. Per quanto riguarda gli acidi grassi a catena corta (SCFA), l'unica variazione nel gozzo e nel ventriglio degli animali nutriti con acidi organici è stata nel livello di propionato. Gli animali nutriti con la minore concentrazione di acido organico hanno mostrato un aumento di quasi dieci volte del propionato nel gozzo, mentre gli animali nutriti con le due concentrazioni di acido organico hanno mostrato un aumento di otto e quindici volte del propionato nel ventriglio, rispettivamente. L'aumento dell'acetato nell'ileo è stato inferiore al doppio. Nel complesso, questi dati supportano l'ipotesi che la maggior parte degli effetti dell'applicazione esterna di acidi organici sia stata evidente sulla resa, mentre gli acidi organici hanno avuto effetti minimi sulla comunità microbica del tratto gastrointestinale inferiore, suggerendo che i modelli di fermentazione della flora residente del tratto gastrointestinale superiore potrebbero essere stati alterati.
Chiaramente, è necessaria una caratterizzazione più approfondita del microbioma per chiarire appieno le risposte microbiche al formiato in tutto il tratto gastrointestinale. Un'analisi più approfondita della tassonomia microbica di specifici compartimenti gastrointestinali, in particolare dei compartimenti superiori come il gozzo, potrebbe fornire ulteriori informazioni sulla selezione di determinati gruppi di microrganismi. Le loro attività metaboliche ed enzimatiche potrebbero anche determinare se abbiano una relazione antagonista con i patogeni che entrano nel tratto gastrointestinale. Sarebbe inoltre interessante condurre analisi metagenomiche per determinare se l'esposizione ad additivi chimici acidi durante la vita degli uccelli selezioni batteri residenti più "tolleranti agli acidi" e se la presenza e/o l'attività metabolica di questi batteri rappresentino un'ulteriore barriera alla colonizzazione da parte dei patogeni.
L'acido formico è stato utilizzato per molti anni come additivo chimico nei mangimi e come acidificante per insilati. Uno dei suoi principali utilizzi è la sua azione antimicrobica per limitare il numero di agenti patogeni negli alimenti e la loro successiva colonizzazione nel tratto gastrointestinale degli uccelli. Studi in vitro hanno dimostrato che l'acido formico è un agente antimicrobico relativamente efficace contro la Salmonella e altri agenti patogeni. Tuttavia, l'uso dell'acido formico nelle matrici alimentari può essere limitato dall'elevata quantità di materia organica negli ingredienti dei mangimi e dalla loro potenziale capacità tampone. L'acido formico sembra avere un effetto antagonista sulla Salmonella e altri agenti patogeni quando ingerito tramite mangimi o acqua potabile. Tuttavia, questo antagonismo si verifica principalmente nel tratto gastrointestinale superiore, poiché le concentrazioni di acido formico possono essere ridotte nel tratto gastrointestinale inferiore, come nel caso dell'acido propionico. Il concetto di proteggere l'acido formico attraverso l'incapsulamento offre un potenziale approccio per fornire più acido al tratto gastrointestinale inferiore. Inoltre, studi hanno dimostrato che una miscela di acidi organici è più efficace nel migliorare le prestazioni del pollame rispetto alla somministrazione di un singolo acido (152). Il Campylobacter nel tratto gastrointestinale può rispondere in modo diverso al formiato, poiché può utilizzare il formiato come donatore di elettroni e il formiato è la sua principale fonte di energia. Non è chiaro se l'aumento delle concentrazioni di formiato nel tratto gastrointestinale sarebbe benefico per il Campylobacter, e ciò potrebbe non verificarsi a seconda di altra flora gastrointestinale che può utilizzare il formiato come substrato.
Sono necessari ulteriori studi per indagare gli effetti dell'acido formico gastrointestinale sui microbi gastrointestinali residenti non patogeni. Preferiamo colpire selettivamente i patogeni senza alterare i membri del microbioma gastrointestinale che sono benefici per l'ospite. Tuttavia, ciò richiede un'analisi più approfondita della sequenza del microbioma di queste comunità microbiche gastrointestinali residenti. Sebbene siano stati pubblicati alcuni studi sul microbioma cieco di uccelli trattati con acido formico, è necessaria maggiore attenzione alla comunità microbica del tratto gastrointestinale superiore. L'identificazione dei microrganismi e il confronto delle somiglianze tra le comunità microbiche gastrointestinali in presenza o assenza di acido formico potrebbero essere una descrizione incompleta. Sono necessarie ulteriori analisi, tra cui metabolomica e metagenomica, per caratterizzare le differenze funzionali tra gruppi composizionalmente simili. Tale caratterizzazione è fondamentale per stabilire la relazione tra la comunità microbica gastrointestinale e le risposte delle prestazioni degli uccelli ai miglioratori a base di acido formico. La combinazione di più approcci per caratterizzare con maggiore accuratezza la funzione gastrointestinale dovrebbe consentire lo sviluppo di strategie di integrazione di acidi organici più efficaci e, in definitiva, migliorare le previsioni di salute e prestazioni ottimali degli uccelli, limitando al contempo i rischi per la sicurezza alimentare.
SR ha scritto questa revisione con la collaborazione di DD e KR. Tutti gli autori hanno fornito contributi sostanziali al lavoro presentato in questa revisione.
Gli autori dichiarano che questa revisione ha ricevuto finanziamenti da Anitox Corporation per avviare la stesura e la pubblicazione. I finanziatori non hanno avuto alcuna influenza sulle opinioni e sulle conclusioni espresse in questo articolo di revisione, né sulla decisione di pubblicarlo.
Gli autori rimanenti dichiarano che la ricerca è stata condotta in assenza di relazioni commerciali o finanziarie che potrebbero essere interpretate come un potenziale conflitto di interessi.
Il Dott. DD desidera ringraziare la Graduate School dell'Università dell'Arkansas per il supporto ricevuto attraverso una borsa di studio per l'insegnamento di alto livello, nonché il continuo supporto del Programma di Biologia Cellulare e Molecolare dell'Università dell'Arkansas e del Dipartimento di Scienze Alimentari. Inoltre, gli autori desiderano ringraziare Anitox per il supporto iniziale nella stesura di questa revisione.
1. Dibner JJ, Richards JD. Uso di promotori della crescita antibiotici in agricoltura: storia e meccanismi d'azione. Poultry Science (2005) 84:634–43. doi: 10.1093/ps/84.4.634
2. Jones FT, Rick SC. Storia dello sviluppo e della sorveglianza antimicrobica nei mangimi per pollame. Poultry Science (2003) 82:613–7. doi: 10.1093/ps/82.4.613
3. Broom LJ. Teoria subinibitoria dei promotori della crescita degli antibiotici. Poultry Science (2017) 96:3104–5. doi: 10.3382/ps/pex114
4. Sorum H, L'Abe-Lund TM. Resistenza agli antibiotici nei batteri di origine alimentare: conseguenze delle interruzioni nelle reti genetiche batteriche globali. International Journal of Food Microbiology (2002) 78:43–56. doi: 10.1016/S0168-1605(02)00241-6
5. Van Immerseel F, Cauwaerts K, Devriese LA, Heesebroek F, Ducatel R. Additivi per mangimi per il controllo della Salmonella nei mangimi. World Journal of Poultry Science (2002) 58:501–13. doi: 10.1079/WPS20020036
6. Angulo FJ, Baker NL, Olsen SJ, Anderson A, Barrett TJ. Uso di antimicrobici in agricoltura: controllo della trasmissione della resistenza antimicrobica all'uomo. Seminars in Pediatric Infectious Diseases (2004) 15:78–85. doi: 10.1053/j.spid.2004.01.010
7. Lekshmi M, Ammini P, Kumar S, Varela MF. Ambienti di produzione alimentare ed evoluzione della resistenza antimicrobica nei patogeni umani di origine animale. Microbiology (2017) 5:11. doi: 10.3390/microorganisms5010011
8. Lourenço JM, Seidel DS, Callaway TR. Capitolo 9: Antibiotici e funzionalità intestinale: storia e stato attuale. In: Ricke SC, a cura di. Migliorare la salute intestinale nel pollame. Cambridge: Burley Dodd (2020). Pagine 189–204. DOI: 10.19103/AS2019.0059.10
9.Rick SC. N. 8: Igiene dei mangimi. In: Dewulf J, van Immerzeel F, eds. Biosicurezza nella produzione animale e nella medicina veterinaria. Lovanio: ACCO (2017). Pagine 144–76.


Data di pubblicazione: 21-04-2025